8. מסקנות

מולקולות המופקות באופן טבעי משמשות באופן מסורתי במוצרי הגנה לעור (טבלה 1, מלאי CosIng). כתוצאה מכך, תרכובות טבעיות המבודדות ו/או מיוצרות באמצעות כלים ביוטכנולוגיים ממיקרואורגניזמים כבר משמשות למטרות דרמטולוגיות בתכשירים קוסמטיים מקומיים. מוצרים אלו יכולים לשפר מבחינה אסתטית את מראה העור אך יכולים גם למנוע ו/או לטפל בהפרעות עור הקשורות לגיל. מעבר למולקולות ה"מבוססות", ישנן מספר מולקולות קטנות ו/או אנזימים המופקים ממיקרואורגניזמים שיש להם פוטנציאל רב לשימוש בתכשירים קוסמטיים או קוסמטיים (טבלה 1).

על פי מחקרים רלוונטיים, סיסטאנצ'ה הוא עשב נפוץ המכונה "עשב הנס שמאריך חיים". המרכיב העיקרי שלו הואcistanoside, בעל השפעות שונות כגוןנוגד חמצון, אנטי דלקתי, וקידום תפקוד מערכת החיסון. המנגנון בין cistanche ועורהַלבָּנָהטמון בהשפעה נוגדת החמצון של cistancheגליקוזידים. המלנין בעור האדם מיוצר על ידי חמצון של טירוזין המזוזז על ידיטירוזינאז, ותגובת החמצון דורשת השתתפות של חמצן, ולכן הרדיקלים החופשיים בחמצן בגוף הופכים לגורם חשוב המשפיע על ייצור המלנין. Cistanche מכיל ציסטאנוסיד, שהוא נוגד חמצון ויכול להפחית את יצירת הרדיקלים החופשיים בגוף, ובכךמעכבמלניןהפקה.

לחץ על Cistanche Powder Bulk

למידע נוסף:

david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501

מעניין לציין כי מספר ביומולקולות שכבר נכללות במלאי האירופאי של מרכיבים קוסמטיים מקובלים (מלאי CosIng) [14] רשומות עבור אחת מהפעילויות הביולוגיות שלהן, אך משמשות באופן שונה ביישומים קוסמטיים. דוגמה אופיינית היא חומצה קוג'ית, הרשומה כ"נוגד חמצון", בעוד שהשימוש העיקרי בקוסמטיקה הוא פעילותה האנטי-טירוזינאז החזקה, ובכך היישום שלה כחומר להלבנת עור (טבלה 1).

בהתחשב במגוון הביולוגי המיקרוביאלי העצום וההסתגלות החיידקית כמעט לכל סביבה על פני כדור הארץ, יש לצפות שחיידקים מייצגים מלאי יוצא דופן של פיגומים מבניים מגוונים ביותר של ביומולקולות עם פעילות פוטנציאלית להגנת העור. למרות שהמחקר על הסביבה הימית החל להתאים מאוחר יותר מהסביבה היבשתית, יש לנו כמה מקרים שבהם יישומים קוסמטיים ופטנטים הם לטובת מיקרואורגניזמים שמקורם ימיים. כפי שצוין במקרה של MAA הידועים בפעילותם הפוטו-פרוקטית, הם כלולים במספר פטנטים על מסנני UV טבעיים. עם זאת, רובם פותחו עם מיקרואורגניזמים מסביבות ימיות (72.2 אחוזים), בעוד שפטנטים שפותחו על מיקרואורגניזמים יבשתיים ומים מתוקים לא עלו על 21.4 אחוז ו-2.4 אחוזים, בהתאמה [135]. מחקר זה משקף שעד היום, בחלק מהמקרים הסביבה היבשתית הוזנחה.

ניגוד עניינים:המחברים אינם מצהירים על ניגוד עניינים.

קיצורי מילים

UVB אולטרה סגול B

הפניות

1. מא, ט.; דנג, ז.; Liu, T. אסטרטגיות ייצור מיקרוביאליות ויישומים של ליקופן וטרפנואידים אחרים. World J. Microbiol. ביוטכנולוגיה. 2016. [CrossRef] [PubMed]

2. Corinaldesi, C.; בארון, ג.; מרסליני, פ.; Dell'Anno, A.; Danovaro, R. מולקולות מיקרוביאליות ימיות והשימוש הפוטנציאלי שלהן במוצרים קוסמטיים וקוסמטיים. Mar. Drugs 2017, 15, 118. [CrossRef]

3. Lobanovska, M.; Pilla, G. Penicillin גילוי ועמידות לאנטיביוטיקה: לקחים לעתיד? ג'יי ביול. Med. 2017, 90, 135–145.

4. ראג'ה, א'; Prabakarana, P. Actinomycetes, ו-Drug-An סקירה. אמ. J. Drug Discov. Dev. 2011, 1, 75–84. [CrossRef]

5. ברדי, J. מטבוליטים מיקרוביאליים ביו-אקטיביים. J. אנטיביוטיקה. 2005, 58, 1–26. [PubMed]

6. פריירה, א.; וצ'ינו, X.; פריירה, ד.; קרוז, JM; מולדס, א.ב; Rodrigues, LR פורמולציות קוסמטיות חדשות המכילות חומר ביולוגי משטח ה-Lactobacillus paracasei. קולואידים גלישה. B Biointerfaces 2017, 155, 522–529. [CrossRef] [PubMed]

7. Argyropoulou, A.; אליגיאניס, נ.; Trougakos, IP; Skaltsounis, AL תרכובות טבעיות בעלות פעילות אנטי אייג'ינג. נאט. לְדַרבֵּן. נציג 2013, 30, 1412–1437. [CrossRef]

8. Cavinato, M.; Jansen-Durr, P. מנגנונים מולקולריים של הזדקנות הנגרמת על ידי UVB של פיברובלסטים עוריים והרלוונטיות שלו להזדקנות צילום של העור האנושי. Exp. Gerontol. 2017, 94, 78–82.

9. Velarde, MC; Demaria, M. מיקוד לתאים מזדקנים: השלכות אפשריות לעיכוב הזדקנות העור: מיני סקירה. גרונטולוגיה 2016, 62, 513–518.

10. Trougakos, IP; ססטי, פ.; צקירי, ע.; Gorgoulis, VG שינויי חלבון לא אנזימטיים לאחר תרגום וביטול ויסות רשת פרוטאוסטזיס בקרצינוגנזה. J. Proteomics 2013, 92, 274–298.

11. Sklirou, A.; Papanagnou, ED; פוקיאלקיס, נ.; Trougakos, מניעת סרטן IP באמצעות הפעלה של מודולים פרוטאוסטטיים. סרטן Lett. 2018, 413, 110–121. [CrossRef] [PubMed]

12. דוחות מחקרי שוק. (נגישה ב-22 באוגוסט 2017).

13. הייד, KD; בהכלי, ע"ה; מוסלמי, MA פטריות - מקור יוצא דופן לקוסמטיקה. צוללני פטריות. 2010, 43, 1–9. [CrossRef]

14. עלות מלאי. זמין באינטרנט: http://ec.europa.eu/growth/sectors/cosmetics/cosing_iw (נגישה ב-22 במרץ 2018).

15. חי, ת"ת; משפט, י.כ; וונג, FC; Kim, SK גילוי בעזרת אנזים של פפטידים נוגדי חמצון מחסרי חוליות ימיים אכילים: סקירה. Mar. Drugs 2017, 15, 42. [CrossRef] [PubMed]

16. Kauppila, TES; Kauppila, JHK; לרסון, NG מיטוכונדריה של יונקים והזדקנות: עדכון. תָא. Metab. 2017, 25, 57–71. [CrossRef]

17. Kusumawati, I.; Indrayanto, G. נוגדי חמצון טבעיים בקוסמטיקה. סוּס הַרבָּעָה. נאט. לְדַרבֵּן. Chem. 2013, 40, 485–505.

18. אברמוביץ, ח.; גרובין, ב.; Ulrich, NP; Cigi'c, B. רלוונטיות וסטנדרטיזציה של מבחני נוגדי חמצון במבחנה: ABTS, DPPH ו-Folin-Ciocalteu. J. Chem. 2018, 2018, 1–9. [CrossRef]

19. Huang, WY; Cai, YZ; Xing, J. משאב נוגד חמצון פוטנציאלי: פטריות אנדופיטיות מצמחי מרפא. כלכלה. בוט. 2007, 61, 14–30. [CrossRef]

20. דנגודר, א.; ג'ושי, CG; קומאר, ארס; פויה, י. ניביה, ט.; חוליקר, מ"מ; Appaiah, KAA פרופיל מולקולרי ונוגדי חמצון, כמו גם הפוטנציאל האנטי-בקטריאלי של פטרייה אנדופיטית מייצרת פוליפנול-Aspergillus austroafricanus CGJ-B3. Mycology 2017, 8, 28–38. [CrossRef]

21. קולה, LM; Furlong, EB; Costa, JAV תכונות נוגדות חמצון של Spirulina (Arthospira) platensis המעובד תחת טמפרטורות ומשטרי חנקן שונים. בראז. קֶשֶׁת. ביול. טכנול. 2007, 50, 161–167. [CrossRef]

22. מירנדה, מ.ס.; סאטו, ש.; Mancini-Filho, J. פעילות נוגדת חמצון של המיקרו-אצה Chlorella vulgaris בתרבית בתנאים מיוחדים. בול. צ'ים. חווה חקלאית. 2001, 140, 165–168.

23. Shalaby, ES; Shanab, SMM פעילות אנטי-רדיקלית ונוגדת חמצון של תמציות שונות של Spirulina platensis כנגד מבחני רדיקליים של DPPH ו-ABTS. ההודי J. Geomarine Sci. 2013, 42, 556–564. [CrossRef]

24. גויריס, ק.; Muylaert, K.; Voorspoels, S.; נוטן, ב.; דה פאפה, ד'; ג"י, ב.; De Cooman, L. איתור פלבנואידים במיקרו-אצות משושלות אבולוציוניות שונות. J. Physiol. 2014, 50, 483–492. [CrossRef]

25. ירז-מרטל, א.; גרסיה-פוזה, ש.; רודריגז-מרטל, ג'; ריקו, מ.; Afonso-Olivares, C.; Gómez-Pinchetti, JL פרופיל פנולי ופעילות נוגדת חמצון של תמציות גולמיות מזני מיקרו אצות וציאנובקטריה. J. Food Qual. 2017, 4, 1–8. [CrossRef]

26. סינג, דפ; פראבה, ר.; ורמה, ש; מינה, ק"ק; Yandigeri, M. תכונות נוגדות חמצון ותכולת פוליפנולים בציאנובקטריה יבשתית. 3 ביוטכנולוגיה. 2017. [CrossRef]

27. ליו, י.; נאן, ל.; ליו, ג'. יאן, ה.; ג'אנג, ד'; האן, X. בידוד וזיהוי של אנדופיטים המייצרים רזברטרול מענבי יין קברנה סוביניון. SpringerPlus 2016. [CrossRef] [PubMed]

28. שי, י; זנג, ש; ליו, י.; Pan, Z. Alternaria sp. MG1, פטרייה המייצרת רזברטרול: בידוד, זיהוי ותנאי גידול אופטימליים לייצור רזברטרול. יישום מיקרוביול. ביוטכנולוגיה. 2012, 95, 369–379. [CrossRef] [PubMed]

29. Baxter, RA תכונות אנטי-אייג'ינג של רזברטרול: סקירה ודיווח על פורמולציה חדשה וחזקה לטיפוח עור נוגדת חמצון. ג'יי קוסמט. דרמטול. 2008, 7, 2–7. [CrossRef] [PubMed]

30. ג'אנג, ג'; שי, ג'; Liu, Y. Bioconversion של רזברטרול באמצעות תאים מנוחה של Alternaria sp. ביוטכנולוגיה. יישום Biochem. 2013, 60, 236–243. [CrossRef]

31. אן, SM; קו, JS; Boo, YC P-coumaric acid לא רק מעכבת פעילות טירוזינאז אנושית במבחנה אלא גם מלנוגנזה בתאים שנחשפו ל-UVB. פיטוטר. מילון 2010, 24, 1175–1180.

32. לורית, נ.; Kanlayavattanakul, M. פעילויות נוגדות חמצון ופנולים של זרעי Passiflflora edulis שהתאוששו משאריות ייצור מיץ. ג'יי אוליאו. Sci. 2013, 62, 235–240. [CrossRef]

33. לופז-בוריו, ש.; Tan, DX; Mayo, JC; סיינץ, RM; מנצ'סטר, LC; רייטר, RJ מלטונין, חומצה קסנטורנית, רזברטרול, EGCG, ויטמין C וחומצה אלפא-ליפואית מפחיתים באופן דיפרנציאלי את נזקי ה-DNA החמצוני הנגרמים על ידי ריאגנטים של פנטון: מחקר על הפעולות האינדיבידואליות והסינרגטיות שלהם. J. Pineal. מילון 2003, 34, 269–277. [CrossRef] [PubMed]

34. סאטוקה, ה.; Kubo, I. Resveratrol כמעכב מסוג kcat עבור טירוזינאז: מעכב מלנוגנזה מוגבר. ביוורג. Med. Chem. 2012, 20, 1090–1099. [CrossRef]

35. לי, מ.; Kildegaard, KR; חן, י.; רודריגז, א.; בורודינה, I.; Nielsen, J. De novo ייצור של רזברטרול מגלוקוז או אתנול על ידי Saccharomyces cerevisiae מהונדס. Metab. Eng. 2015, 32, 1–11. [CrossRef] [PubMed]

36. לים, CG; פאולר, ז"ל; Hueller, T.; שייפר, ש.; Koffffas, MA ייצור רזברטרול עם תשואה גבוהה ב-Escherichia coli מהונדס. יישום סביבה. מיקרוביול. 2011, 77, 3451–3460. [CrossRef]

37. סידור, ט.; שייפר, ש.; Boles, E. עלייה ניכרת בייצור רזברטרול על ידי זני שמרים תעשייתיים רקומביננטיים עם שימוש במדיום העשיר. יישום סביבה. מיקרוביול. 2010, 76, 3361–3363. [CrossRef]

38. Balestrazzi, A.; בונדאי, מ.; Calvio, C.; מתיבי, פ.; Carbonera, D. חיידקים הקשורים לעלה מצפצפה לבנה מהונדסת המייצרות תרכובות דמויות רסברטרול: בידוד, אפיון מולקולרי והערכה של סבילות ללחץ חמצוני. פחית. J. Microbiol. 2009, 55, 829–840. [CrossRef] [PubMed]

39. Xiao, J.; ג'אנג, ש; Gao, Y.-Q.; Tang, J.-J.; ג'אנג, א.-ל.; גאו, ג'יי-מ. מטבוליטים משניים מהאנדופיטי Botryosphaeria dothidea של Melia Azedarach ופעילותם האנטי-פטרייתית, אנטיבקטריאלית, נוגדת חמצון וציטוטוקסית. J. Agric. Food Chem. 2014, 62, 3584–3590. [CrossRef] [PubMed]

40. מו, י.; מנג, ג'; פו, X.; וואנג, X.; טיאן, ג'; וואנג, מ.; פנג, י.; Zhou, L. פעילויות אנטי-מיקרוביאליות ונוגדי חמצון והשפעה של 1-תוספת hexadecene על תפוקות palmarumycin C2 ו-C3 בתרבית נוזלית של פטריית אנדופיטית Berkleasmium sp. Dzf12. מולקולות 2013, 18, 15587–15599. [CrossRef] [PubMed]

41. Kerksick, C.; Willoughby, D. תפקיד נוגד החמצון של תוספי גלוטתיון ו-N-אצטיל-ציסטאין ולחץ חמצוני הנגרם על ידי פעילות גופנית. J. Int. Soc. ספורט נוטר. 2005, 2, 38–44. [CrossRef]

42. סונתליה, ש.; דאולטאבאד, ד.; Sarkar, R. Glutathione כחומר הלבנת עור: עובדות, מיתוסים, עדויות ומחלוקות. הודי J. Dermatol. Venereol. Leprol. 2016, 82, 262–272. [CrossRef]

43. פיי, ל.; וואנג, י.; Chen, S. שיפר ייצור גלוטתיון על ידי ביטוי גנים ב-Pichia pastoris. תהליך ביולוגי. ביוסיסט. Eng. 2009, 32, 729–735. [CrossRef] [PubMed]

44. וואנג, סי; ג'אנג, ג'; וו, ה.; לי, ז; Ye, Q. ביטוי הגנטי gshF הטרולוגי במערכות וקטוריות שונות ב-Escherichia coli לייצור גלוטתיון משופר. J. Biotechnol. 2015, 214, 63–68. [CrossRef]

45. פאלוזה, פ.; Krinsky, NI Astaxanthin וקנתקסנטין הם נוגדי חמצון חזקים במודל ממברנה. קֶשֶׁת. Biochem. ביופיס. 1992, 267, 291–295. [CrossRef] 46. Yamamoto, K.; Hara, KY; מוריטה, ט.; נישימורה, א.; סאסאקי, ד'; Ishii, J. שיפור ייצור astaxanthin ב-Xanthophyllomyces dendrorhous על ידי שיטה יעילה למחיקה מלאה של גנים. מיקרוב. עובדת תא. 2016, 15, 155. [CrossRef] [PubMed]

47. טריפאטי, יו.; סרדה, ר.; Ravishankar, GA השפעת תנאי התרבות על גידול אצות ירוקות - Haematococcus pluvialis וייצור אסטקסנטין. Acta Physiol. צמח. 2002, 24, 323–329. [CrossRef]

48. מולר, ל.; Boehm, V. פעילות נוגדת חמצון של תרכובות בטא-קרוטן במבחנים שונים במבחנה. מולקולות 2011, 16, 1055–1069. [CrossRef]

49. ז'ו, פ.; לו, ל.; פו, ש.; ז'ונג, X.; הו, מ.; Deng, Z. הנדסה ממוקדת והגדלה של ייצור יתר של ליקופן ב-Escherichia coli. תהליך. Biochem. 2015, 50, 341–346. [CrossRef]

50. נליס, ח"י; De Leenheer, A. P, Revestigation of Brevibacterium sp. זן KY-4313 כמקור לקנתקסנטין. יישום סביבה. מיקרוביול. 1989, 55, 2505–2510.

51. סינדהו, ארה"ב; Preethi, KC; Kuttan, R. פעילות נוגדת חמצון של קרוטנואיד לוטאין במבחנה ובאינבו. ההודי J. Exp. ביול. 2010, 843–848.

52. Del Campo, JA; מורנו, ג'; רודריגז, ה.; אנג'לס ורגאס, מ.; ריבאס, ג'; Guerrero, MG תכולת קרוטנואידים של מיקרו-אצות כלורופיט: גורמים הקובעים הצטברות לוטאין ב- Muriellopsis sp. (כלורופיטה). J. Biotechnol. 2000, 76, 51–59. [CrossRef]

53. Venugopalan, V.; טריפאטי, סק; נהר, פ.; Saradhi, PP; דאס, ר"ה; Gautam, HK אפיון של איזומרים קנתקסנטין מבודדים מאדמה חדשה Dietzia sp. ופעילויות נוגדות החמצון שלהם. J. Microbiol. ביוטכנולוגיה. 2013, 23, 237–245. [CrossRef]

54. מהפאטרה, ש.; Banerjee, D. הערכה של עוצמה נוגדת חמצון במבחנה של אקסופוליסכריד מ- Fusarium solani SD5 אנדופיטי. Int. ג'יי ביול. מקרומול. 2013, 53, 62–66. [CrossRef]

55. Zheng, LP; זו, ט.; מא, י ג; וואנג, JW; Zhang, YQ נוגד חמצון ופגיעה ב-DNA בהגנה על פעילות אקסופוליסכרידים מהחיידק האנדופיטי Bacillus cereus SZ1. מולקולות 2016, 21, 174. [CrossRef] [PubMed]

56. ליו, ג'; לואו, ג'; אתה, ה.; שמש, י.; לו, ז; Zeng, X. ייצור, אפיון ופעילויות נוגדות חמצון במבחנה של אקסופוליסכרידים מהחיידק האנדופיטי Paenibacillus polymyxa EJS-3. פחמימות. Polym. 2009, 78, 275–281. [CrossRef]

57. ליו, ג'; לואו, ג'; אתה, ה.; שמש, י.; לו, ז; Zeng, X. אופטימיזציה בינונית ואפיון מבני של אקסופוליסכרידים מהחיידק האנדופיטי Paenibacillus polymyxa EJS-3. פחמימות. Polym. 2010, 79, 206–213. [CrossRef]

58. שיאו, ר.; Zheng, Y. סקירה של חומרים פולימריים חוץ-תאיים של מיקרו-אצות (EPS) והיישומים שלהם. ביוטכנולוגיה. עו"ד 2016, 34, 1225–1244. [CrossRef]

59. חן, י.; מאו, ו.; טאו, ה.; ז'ו, ו.; Qi, X.; Chen, Y. אפיון מבני ותכונות נוגדות חמצון של אקסופוליסכריד המיוצר על ידי פטריית המנגרוב האנדופיטית Aspergillus sp. Y16. Bioresour. טכנול. 2011, 102, 8179–8184. [CrossRef] [PubMed]

60. Serrato, RV; סאסאקי, GL; קרוז, LM; Pedrosa, FO; גורין, הרשות הפלסטינית; Iacomini, M. תנאי תרבות לייצור אקזופוליסכריד חומצי על ידי החיידק מקבע חנקן Burkholderia tropica. פחית. J. Microbiol. 2006, 52, 489–493. [CrossRef] [PubMed]

61. טרבלסי, ל.; חייב, או.; מנארי, א.; עביד-אספיפי, ש; Aleya, L. אפיון חלקי ופעילויות נוגדות חמצון ואנטי שגשוג של פוליסכרידים תאיים מימיים מהמיקרו-אצות התרמופיליות Graesiella sp. השלמה של BMC. אלטרנט. Med. 2016. [CrossRef]

62. רומאי, ג.; גונזלס, ר.; לדון, נ.; רמירז, ד.; Rimbau, V. C-phycocyanin: biliprotein עם השפעות נוגדות חמצון, אנטי דלקתיות ונוירו-הגנה. Curr. חלבון Pept. Sci. 2003, 4, 207–216. [CrossRef] [PubMed]

63. טסר, או.סי.; ארדל, ש.; Taskin, M. Chitosan ייצור על ידי Psychrotolerant Rhizopus oryzae בתנאי תסיסה פתוחה לא סטריליים. Int. ג'יי ביול. מקרומול. 2016, 89, 428–433. [CrossRef]

64. אסאכי, ר.; Karimi, K. הפקת אתנול וצ'יטוס משופרת מקש חיטה על ידי Mucor indicus עם צריכת תזונה מינימלית. תהליך. Biochem. 2013, 48, 1524–1531. [CrossRef]

65. Logesh, AR; Thillaimaharani, KA; שרמילה, ק.; קלאיסלוואם, מ.; Raffiffi, SM ייצור של כיטוזן מפטריות אנדוליתיות מבודדות מסביבת המנגרוב והפעילות האנטגוניסטית שלה. פאק אסיאתי. ג'יי טרופ. ביומד. 2012, 2, 140–143. [CrossRef]

66. אורדונייז, ל.; גרסיה, ג'; Bolanños, G. ייצור קומפלקסים של כיטין וצ'יטין-גלוקן מביומסה של Aspergillus niger באמצעות מים תת-קריטיים. בהליכי הכנס האיברו-אמריקאי לנוזלים על קריטיים, קרטחנה, קולומביה, 1-5 באפריל 2013.

67. גואו, ג'; ראו, ז; יאנג, ט.; מאן, ז; שו, מ.; Zhang, X. ייצור מלנין ברמה גבוהה על ידי בידוד חדש של Streptomyces kathirae. FEMS Microbiol. Lett. 2014, 357, 85–91. [CrossRef] [PubMed]

68. טרנגיני, ק.; Mishra, S. ייצור מלנין על ידי בידוד מיקרוביאלי בקרקע על תמצית פסולת פירות: אופטימיזציה דו-שלבית של פרמטרים מרכזיים. ביוטכנולוגיה. נציג 2014, 4, 139–146. [CrossRef] [PubMed]

69. בקסטד, א.א.; ג'אנג, י.; הילמר, JK; סמית', HJ; ברמל, ע.; Foreman, CM נטרול מצב נרגש במיוחד של הפיגמנט החיידקי violacein. J. Phys. Chem. 2017. [CrossRef] [PubMed]

70. אחמד, וושינגטון; יוסוף, ניו זילנד; נורדין, נ.; זכריה, ז"א; Rezali, MF ייצור ואפיון של violacein על ידי Chromobacterium violaceum מבודד מקומי הגדל בפסולת חקלאית. יישום Biochem. ביוטכנולוגיה. 2012, 167, 1220–1234. [CrossRef]

71. וואנג, ה.; ג'יאנג, פ.; לו, י.; רואן, ז; ג'יאנג, ר.; Xing, X.-H. אופטימיזציה של תנאי התרבות לייצור violacein על ידי זן חדש של Duganella sp. B2. Biochem. Eng. י' 2009, 44, 119–124. [CrossRef]

72. פאתאק, י. Sonker, AS; ריצה, ר.; Rajneesh, R.; Kannaujiya, VK; סינג, ו.; אחמד, H. הקרנה וטיהור חלקי של פיגמנט סקוטונמין פוטו-מגן מקרום ציאנובקטריאלי השוכן על המונומנטים ההיסטוריים בוורנאסי וסביבתה, הודו. מיקרוביול. מילון 2017. [CrossRef]

73. חן, ג'; זאו, ל.; שו, ג'; יאנג, ר.; הוא, ש.; Yan, X. קביעת scytonemin מחומצן ב-Nostoc commune Vauch בתרבית בתנאים שונים על ידי כרומטוגרפיה נוזלית בעלת ביצועים גבוהים יחד עם ספקטרומטריית מסה quadrupole משולשת. J. Appl. פיקול. 2013, 25, 1001–1007. [CrossRef]

74. נקשימה, ט.; אנזאי, ק.; קוואהרה, נ.; קומאקי, ח.; מיאדו, ש; Harayama, S. תווים פיזיקוכימיים של מעכב טירוזינאז המיוצר על ידי Streptomyces roseolilacinus NBRC 12815. Biol. פארם. שׁוֹר. 2009, 32, 832–836. [CrossRef]

75. Kurbanoglu, EB; אוזדל, מ.; אוזדל, אוג; Algur, OF ייצור משופר של prodigiosin על ידי Serratia marcescens MO-1 באמצעות פפטון קרן ראם. בראז. J. Microbiol. 2015, 46, 631–637. [CrossRef] [PubMed]

76. בוריק, מ.; Danevcic, T.; Stopar, D. Prodigiosin מ-Vibrio sp. DSM 14379; פיגמנט חדש מגן UV. מיקרוב. אקול. 2011, 62, 528–536. [CrossRef]

77. לורנס, KP; Gacesa, R.; ארוך, פ.פ; הגנה מולקולרית מולקולרית צעירה של קרטינוציטים אנושיים במבחנה על ידי חומצת אמינו דמויית מיקוספורין המופיעה באופן טבעי פוליאתן. בר. ג'יי דרמטול. 2017, 178, 1353–1363. [CrossRef]

78. ראסטוגי, רפ; Incharoensakdi, A. אפיון של תרכובות הקרנת UV, חומצות אמינו דמויות מיקוספורין ו-scytonemin ב-cyanobacterium Lyngbya sp. CU2555. FEMS Microbiol. אקול. 2014, 87, 244–256. [CrossRef] [PubMed]

79. ליבקינד, ד.; מולין, מ.; סומארוגה, ר.; Sampaio, JP; van Broock, M. הפצה פילוגנטית של ציקלוספורין פטרייתי בתוך Pucciniomycotina (Basidiomycota). שמרים (צ'יצ'סטר, אנגליה) 2011, 28, 619–627. [CrossRef] [PubMed]

80. קוגי, ט.; גוסטינקר, סי; וולקמן, מ.; גורבושינה, ע"א; גונדה-צימרמן, נ.; קוגי, ט.; Gorbushina, AA Mycosporines בפטריות אקסטרמופיליות - אוסמוליטים משלימים חדשים? סביבה. Chem. 2006, 3, 105–110. [CrossRef]

81. ווי, ש.; שו, נ.; Ji, Z. זיהוי של חומצה קוג'ית המייצרת Aspergillus afflatus F52. אקטה מיקרוביול. חטא. 2014, 1155–1160.

82. El-Aasar, SA מחקרי תנאים תרבותיים על ייצור חומצה קוג'ית על ידי Aspergillus parasiticus. Int. J. Agric. ביול. 2006, 8, 468–473.

83. מוחמד, ר.; Ariffff, AB ביוטרנספורמציה של מקורות פחמן שונים לחומצה קוג'ית על ידי מערכת אנזימים קשורה לתא של A. afflatus Link 44-1. Biochem. Eng. י' 2007, 35, 203–209. [CrossRef]

84. ז'או, ל.; קים, JC; פאיק, MJ; לי, ו.; Hur, JS מגן UV רב תכליתי ואפשרי לעור, (3R)-5-hydroxymellein, המיוצר על ידי פטרייה אנדוליתית המבודדת מ-Parmotrema austrosinense. מולקולות 2016, 22, 26. [CrossRef]

85. רובלדו, א.; אגילרה-קרבו, א.; רודריגז, ר.; מרטינז, JL; גרזה, י. Aguilar, CN ייצור חומצה אלגית על ידי Aspergillus niger בתסיסה במצב מוצק של שאריות רימונים. J. Ind. Microbiol. ביוטכנולוגיה. 2008, 35, 507–513. [CrossRef]

86. Smith, WP ההשפעות של חומצת חלב מקומית L( פלוס) וחומצה אסקורבית על הלבנת העור. Int. ג'יי קוסמט. Sci. 1999, 21, 33–40. [CrossRef] [PubMed]

87. Maas, RH; ספרינגר, ג'; Eggink, G.; Weusthuis, RA חילוף החומרים של Xylose בפטרייה Rhizopus oryzae: השפעת הצמיחה והנשימה על ייצור חומצת חלב L פלוס. J. Ind. Microbiol. ביוטכנולוגיה. 2008, 35, 569–578. [CrossRef]

88. שי, IL; Van, YT ייצור פולי-(חומצה גמא-גלוטמית) ממיקרואורגניזמים ויישומיו השונים. Bioresour. טכנול. 2001, 79, 207–225. [CrossRef]

89. Schallreuter, KU; Wood, JW מנגנון פעולה אפשרי לחומצה אזלאית באפידרמיס האנושי. קֶשֶׁת. דרמטול. מילון 1990, 282, 168–171. [CrossRef]

90. Balina, LM; Graupe, K. הטיפול במלזמה הוא 20 אחוז חומצה אזלאית לעומת 4 אחוז קרם הידרוקינון. Int. ג'יי דרמטול. 1991, 30, 893–895. [CrossRef]

91. Nazzaro-Porro, M.; פאסי, ש.; Morpurgo, G.; Breathnach, AS זיהוי של מעכבי טירוזינאז בתרביות של Pityrosporum והשפעתם המלנוציטוטוקסית. פִּיגמֶנט. תא 1979, 4, 234–243.

92. Yin, C.; ג'אנג, סי; Gao, M. סינתזה מזורזת באמצעות אנזים של ויטמין E סוקסינאט באמצעות אדם שעבר שינוי כימי-435. סַנְטֵר. J. Chem. Eng. 2011, 19, 135–139. [CrossRef]

93. וויקן, AJ; Gibbens, JW; Knox, KW מחקרים השוואתיים על בידוד של חומצה ליפוטאיכואית ממברנה מתסיסת לקטובצילוס. ג'יי בקטריול. 1973, 113, 365–372.

94. טוקיווה, י.; קיטאגאווה, מ.; Raku, T. סינתזה אנזימטית של אסטר חומצה ארבוטין undecylenic והשפעתה המעכבת על טירוזינאז פטריות. ביוטכנולוגיה. Lett. 2007, 29, 481–486. [CrossRef]

95. Mapari, SA; מאיר, א.ש; Thrane, U.; Frisvad, JC זיהוי של מפעלים בטוחים לתאים פטרייתיים בעלי פוטנציאל בטוח לייצור צבעי מאכל טבעיים של פוליקטידים תוך שימוש ברציונל כימוטקסונומי. מיקרוב. עובדת תא. 2009. [CrossRef]

96. Dufossé, L. Encyclopedia of Microbiology, מהדורה שלישית; עיתונות אקדמית: ניו יורק, ניו יורק, ארה"ב, 2009; פיגמנטים מיקרוביאליים; עמ' 457–471.

97. Buenger, J.; Driller, H. Ectoin: חומר טבעי יעיל למניעת הזדקנות מוקדמת של UVA. עור פרמקול. פיזיול. 2004, 17, 232–237. [CrossRef]

98. בקר, ג'; שפר, ר.; קולשטדט, מ.; Harder, BJ; בורכרט, נ"ס; Stoveken, N. Systems הנדסה מטבולית של Corynebacterium glutamicum לייצור הצ'פרון הכימי אקטואין. מיקרוב. עובדת תא. 2013. [CrossRef] [PubMed]

99. בוטה, סי; די ג'ורג'יו, סי; Sabatier, AS; De Meo, M. Genotoxicity של אור נראה (400-800 ננומטר) והערכת photoprotection של סעיף, L-ergothioneine ומניטול וארבעה מסנני קרינה. J. Photochem. Photobiol. ב' 2008, 91, 24–34. [CrossRef] [PubMed]

100. Pugh, S.; מק'קנה, ר.; Halloum, I.; Nielsen, DR הנדסה Escherichia coli לייצור אלכוהול בנזיל מתחדש. Metab. Eng. 2015, 2, 39–45. [CrossRef]

101. Ni, J.; טאו, פ.; דו, ח.; Xu, P. מחקה מסלול טבעי לביוסינתזה דה נובו: ייצור ונילין טבעי ממקורות פחמן נגישים. Sci. נציג 2015. [CrossRef] [PubMed]

102. ימאדה, מ.; אוקאדה, י.; יושידה, ט.; Nagasawa, T. Vanillin ייצור באמצעות תאי Escherichia coli המבטאים יתר על המידה isoeugenol monooxygenase של Pseudomonas putida. ביוטכנולוגיה. Lett. 2008, 30, 665–670. [CrossRef]

103. Zhao, L.-Q.; שמש, ז'-ח; ג'נג, פ.; Zhu, L.-L. טרנספורמציה ביולוגית של isoeugenol לונילין על ידי זן חדש של Bacillus fusiformis. ביוטכנולוגיה. Lett. 2005, 27, 1505–1509. [CrossRef]

104. Ravasio, D.; Wendland, J.; Walther, A. תרומה מרכזית של מסלול ארליך לייצור 2-פניל אתנול/וורד טעם ב- Ashbya gossypii. FEMS שמרים ר. 2014, 14, 833–844. [CrossRef]

105. אייכמן, MMW; Schrader, J. תהליך ביולוגי דו-פאזי מימי-אורגני לייצור יעיל של כימיקלים הארומה הטבעיים 2-פניל אתנול ו2-פניל אתילאצטט עם שמרים. יישום מיקרוביול. ביוטכנולוגיה. 2006, 71, 440–443. [CrossRef]

106. Willrodt, C.; דוד, ג; קורנליסן, ש.; בוהלר, ב.; ג'ולסינג, חבר הכנסת; Schmid, A. הנדסת הפרודוקטיביות של Escherichia coli רקומביננטי להיווצרות לימונן מגליצרול במדיה מינימלית. ביוטכנולוגיה. י' 2014, 9, 1000–1012. [CrossRef]

107. דובלר, ל.; de Carvalho, BR; אלבס, ש.; Neves, BC; פרייר, ג.; Almeida, RV ייצור rhamnolipid משופר על ידי Pseudomonas aeruginosa המביע יתר על המידה estA במדיום פשוט. PloS ONE 2017, 12, e0183857. [CrossRef]

108. Desai, JD; Banat, IM ייצור מיקרוביאלי של פעילי שטח והפוטנציאל המסחרי שלהם. מיקרוביול. מול. ביול. Rev. 1997, 47–64.

109. Castelblanco-Matiz, LM; ברבצ'אנו-טורס, א'; Ponce-Noyola, T.; ראמוס-ולדיביה, AC; Cerda García-Rojas, CM; Flores-Ortiz, CM ייצור קרוטנואידים וביטוי גנים בזן מוטנטי Xanthophyllomyces dendrorhous המייצר יתר על המידה אסטקסנטין. קֶשֶׁת. מיקרוביול. 2015, 197, 1129–1139. [CrossRef] [PubMed]

110. ברמן, י. זורילה-לופז, U.; פאר, ג.; ז'ו, ג; סנדמן, ג.; Twyman, RM; קאפל, ט.; Christou, P. קרוטנואידים חשובים מבחינה תזונתית כמוצרי צריכה. Phytochem. Rev' ​​2015, 14, 727–743. [CrossRef]

111. הנריקז, ו.; אסקובר, סי; גלרזה, ג'; גימפל, J. קרוטנואידים במיקרו-אצות. בקרוטנואידים בטבע; Strange, E., Ed.; Springer International Publishing: ניו יורק, ניו יורק, ארה"ב, 2016; עמ' 219–237.

112. לאו, נ.-ש.; מטסואי, מ.; עבדאללה, AA-A. ציאנובקטריה: מפעלים מיקרוביאליים פוטו-אוטוטרופיים לסינתזה בת קיימא של מוצרים תעשייתיים. J. Biomed. ביוטכנולוגיה. 2015, 2, 1–9. [CrossRef] [PubMed]

113. דאס, א.; Yoon, SH; לי, ש; קים, JY; אה, DK; Kim, SW עדכון על ייצור קרוטנואידים מיקרוביאליים: יישום של כלים הנדסיים מטבוליים עדכניים. יישום מיקרוביול. ביוטכנולוגיה. 2007, 77, 505–512. [CrossRef]

114. מטה-גומז, LC; Montanez, JC; מנדז-זוואלה, א. Aguilar, CN ייצור ביוטכנולוגי של קרוטנואידים על ידי שמרים: סקירה כללית. מיקרוב. עובדת תא. 2014. [CrossRef]

115. ליו, ג'; וואנג, X.; פו, ח; ליו, ס.; קאן, ג'; Jin, C. התקדמות אחרונה באקסופוליסכרידים אנדופיטיים: ייצור, אפיון מבני, תפקיד פיזיולוגי ופעילות ביולוגית. פחמימות. Polym. 2017, 157, 1113–1124. [CrossRef] [PubMed]

116. ליו, פ.; אוי, VE; Chang, ST פעילויות ניקוי רדיקלים חופשיים של תמציות פוליסכריד פטריות. Life Sci. 1997, 60, 763–771. [CrossRef]

117. ג'ין, מ.; Cai, YX; לי, JR; Zhao, H. 1,10-phenanthroline-Fe2 בתוספת בדיקה חמצונית של רדיקל הידרוקסיל המיוצר על ידי H2O2/Fe. פרוג. Biochem. ביופיס. 1996, 23, 553–555.

118. חן, ב.; אתה, ו.; הואנג, ג'; יו, י.; Chen, W. תכונת בידוד ונוגד חמצון של הפוליסכריד החוץ תאי מ-Rodella reticulata. World J. Microbiol. ביוטכנולוגיה. 2010, 26, 833–840. [CrossRef]

119. Cirulis, JT; סקוט, JA; Ross, GM ניהול של עקה חמצונית על ידי מיקרו אצות. פחית. J. Physiol. פרמקול. 2013, 91, 15–21. [CrossRef] [PubMed]

120. חסן, HM ציטוטוקסיות של oxyradicals וההתפתחות של סופראוקסיד דיסמוטאזות. בחמצן, ביטוי גנים ותפקוד תאי; Massaro, D., Clerch, L., Eds.; מרסל דקר: ניו יורק, ניו יורק, ארה"ב, 1997.

121. ברונו-ברסנה, JM; Azcarate-Peril, MA; חסן, HM תפקידם של אנזימים נוגדי חמצון בעמידות חיידקים לחומצות אורגניות. יישום סביבה. מיקרוביול. 2010, 76, 2747–2753. [CrossRef] [PubMed]

122. Rahman, K. מחקרים על רדיקלים חופשיים, נוגדי חמצון וגורמים משותפים. קלינ. מרווח הזדקנות 2007, 2, 219–236.

123. אבוט, דא; סויר, ע.; Duong, GH; de Hulster, E.; פרונק, JT; van Maris, AJ ביטוי יתר של Catalase מפחית מתח חמצוני המושרה על ידי חומצת חלב ב-Saccharomyces cerevisiae. יישום סביבה. מיקרוביול. 2009, 75, 2320–2325. [CrossRef]

124. שאו, נ.; בק, CF; Lemaire, SD; Krieger-Liszkay, A. עמית אלקטרונים פוטוסינתטי משפיע על איתות H2O2 על ידי ביטול של קטלאז ב- Chlamydomonas reinhardtii. פלנטה 2008, 228, 1055–1066. [CrossRef]

125. הנציבות האירופית. איסור על ניסויים בבעלי חיים. זמין באינטרנט: https://ec.europa.eu/growth/sectors/cosmetics/animal-testing_iw (נגישה ב-14 באפריל 2019).

126. גאו, ש; Garcia-Pichel, F. מסנני קרינה מיקרוביאליים אולטרה סגולים. נאט. Rev. Microbiol. 2011, 9, 791–802. [CrossRef]

127. פלונקה, ראש הממשלה; Grabacka, M. Melanin סינתזה במיקרואורגניזמים-ביוטכנולוגיים ורפואיים. Acta Biochim. פול. 2006, 53, 429–443.

128. Nosanchuk, JD; Stark, RE; Casadevall, A. מלנין פטרייתי: מה אנחנו יודעים על מבנה? חֲזִית. מיקרוביול. 2015. [CrossRef]

129. Sansinenea, E.; Ortiz, A. Melanin: הגנת אור עבור חומרי הדברה מבוססי Bacillus thuringiensis. ביוטכנולוגיה. Lett. 2015, 37, 483–490. [CrossRef] [PubMed]

130. Matsui, K.; נציפי, ע.; חיראי, י.; וואדה, נ.; Matsugo, S.; Sakamoto, T. הפיגמנט סופג UV הציאנובקטריאלי scytonemin מציג פעילות שולפת רדיקלים. J. Gen. Appl. מיקרוביול. 2012, 58, 137–144. [CrossRef]

131. גרסיה-פיכל, פ.; שרי, ND; Castenholz, RW עדות לתפקיד קרם הגנה אולטרה סגול של הפיגמנט החוץ תאי scytonemin בציאנובקטריה היבשתית Chlorogloeopsis sp. Photochem. Photobiol. 1992, 56, 17–23. [CrossRef]

132. רסטוגי, רפ; Sonani, RR; Madamwar, D. Cyanobacterial קרם הגנה scytonemin: תפקיד בהגנה על אור ומחקר ביו-רפואי. יישום Biochem. ביוטכנולוגיה. 2015, 176, 1551–1563. [CrossRef]

133. דרשן, נ.; Manonmani, HK Prodigiosin, והיישומים הפוטנציאליים שלו. J. Food Sci. טכנול. 2015, 52, 5393–5407. [CrossRef]

134. דוראן, נ.; יוסטו, GZ; דוראן, מ.; ברוצ'י, מ.; קורדי, ל.; Tasic, L. Advances in Chromobacterium violaceum ומאפיינים של violacein-המטבוליט המשני העיקרי שלו: סקירה. ביוטכנולוגיה. עו"ד 2016, 34, 1030–1045. [CrossRef]

135. קולבלה, פ.; מולין, מ.; Libkind, D. מסנני קרינה UV ממקור מיקרוביאלי: ציקלוספורין וחומצות אמינו דמויות מיקוספורין. פט. ביוטכנולוגיה. 2014, 8, 179–193. [CrossRef]

136. חוסרבי, ש; חודבאנדה, ש.; אגה, נ.; Bakhtiarian, M. השפעות של מליחות וקרינה אולטרה סגולה על הצטברות ביולוגית של חומצות אמינו דמויות מיקוספורין בארטמיה מאגם אורמיה (איראן). Photochem. Photobiol. 2013, 89, 400–405. [CrossRef]

137. גורבושינה, ע"א; Whitehead, K.; דורנידן, ט.; נייסי, א.; שולטה, א.; Hedges, JI מושבות פטריות שחורות כיחידות הישרדות: ציקלוספורין היפל מסונתז על ידי פטריות מיקרו קולוניאליות השוכנות בסלע. פחית. ג'יי בוט. 2003, 81, 131–138. [CrossRef]

138. גילברו, JM; Olsson, MJ המלנוגנזה והמנגנונים של חומרי הבהרת עור-קיימים וגישות חדשות. Int. ג'יי קוסמט. Sci. 2011, 33, 210–221. [CrossRef] [PubMed]

139. סמיט, נ.; Vilanova, J.; Pavel, S. המצוד אחר חומרי הלבנת עור טבעיים. Int. י.מול. Sci. 2009, 10, 5326–5349. [CrossRef] [PubMed]

140. פילאיאר, ט.; מניקם, מ.; Namasivayam, V. סוכני הלבנת עור: פרספקטיבה של כימיה רפואית של מעכבי טירוזינאז. J. Enzyme Inhib Med. Chem. 2017, 32, 403–425. [CrossRef]

141. פילאיאר, ט.; Namasivayam, V.; מניקם, מ.; יונג, SH מעכבי מלנוגנזה: סקירה מעודכנת. J. Med. Chem. 2018, 61, 7395–7418. [CrossRef] [PubMed]

142. הא, טי ג'; יאנג, MS; ג'אנג, DS; Choe, SU; Park, GH פעילויות מעכבות של נגזרות פלבנון מבודדות מ-Sophora flavecens למלנוגנזה. שׁוֹר. קוריאני כים. Soc. 2001, 22, 97–99.

143. Parvez, S.; קאנג, מ.; צ'ונג, HS; צ'ו, סי; הונג, MC; Shin, MK סקר ומנגנון של חומרי דה-פיגמנטציה והבהרת העור. פיטוטר. מילון 2006, 20, 921–934. [CrossRef]

144. רוספריזן, מ.; Mohd, SM; נורשיקין, ש; מדיח, MS; Arbakariya, BA חומצה קוג'ית: יישומים ופיתוח של תהליך תסיסה לייצור. ביוטכנולוגיה. מול. ביול. 2010, 5, 24–37.

145. אורטיז-רואיז, קורות חיים; ברנה, י. טודלה, ג'; ורון, ר.; Garcia-Canovas, F. פעולה של חומצה אלגית על מסלול הביוסינתזה של מלנין. ג'יי דרמטול. Sci. 2010, 5, 24–37. [CrossRef]

146. ונטורה, י. בלמארס, ר.; אגילרה-קרבו, א.; Gutiérrez-Sanchez, G.; Rodríguez-Herrera, R. פירוק ביולוגי פטרייתי של טאנינים משיח קריאוזוט (Larrea tridentata) ושיח טאר (Fluorensia cernua) לייצור חומצה גלית ו-ellagic. Food Technol. ביוטכנולוגיה. 2008, 46, 213–217.

147. Sepúlveda, L.; אסקאיו, א.; רודריגז-הררה, ר.; אגילרה-קרבו, א.; Aguilar, CN Ellagic acid: תכונות ביולוגיות ופיתוח ביוטכנולוגי לתהליכי ייצור. אפר. J. Biotechnol. 2011, 10, 4518–4523.

148. בראתנך, AC; Nazzaro-Porro, M.; פאסי, ש.; Zina, G. טיפול בחומצה אזלאית בהפרעות בפיגמנטציה. קלינ. דרמטול. 1989, 7, 106–119. [CrossRef]

149. סיבר, מ.א.; Hegel, JK חומצה אזלאית: תכונות ואופן פעולה. עור פרמקול. פיזיול. 2014, 27, 9–17. [CrossRef] [PubMed]

150. Breathnach, AS היפרפיגמנטציה של מלנין של העור: מלזמה, טיפול מקומי בחומצה אזלאית וטיפולים נוספים. Cutis 1989, 7, 106–119.

151. אוסוקי, א.; אוהשי, א.; סאטו, ה.; אוצ'איי, י. איצ'יאשי, מ.; Funasaka, Y. ההשפעה המעכבת של חומצה גליקולית וחומצה לקטית על סינתזת מלנין בתאי מלנומה. Exp. דרמטול. 2003, 12, 43–50. [CrossRef] [PubMed]

152. Zhang, ZY; ג'ין, ב.; Kelly, JM ייצור חומצת חלב מחומרים מתחדשים על ידי פטריות Rhizopus. Biochem. Eng. י' 2007, 35, 251–263. [CrossRef]

153. ליו, X.; ליו, פ.; ליו, ס.; לי, ה.; לינג, פ.; Zhu, X. פולי-גמא-גלוטמט מ-Bacillus subtilis מעכב פעילות טירוזינאז ומלנוגנזה. יישום מיקרוביול. ביוטכנולוגיה. 2013, 97, 9801–9809. [CrossRef]

154. Mohorˇciˇc, M.; פרידריך, י. רנימל, א.; אנדרה, פ.; מנדין, ד.; Chaumont, J.-P. ייצור אנזים הלבנת מלנין ממקור פטרייתי ויישומו בקוסמטיקה. ביוטכנולוגיה. תהליך ביולוגי. Eng. 2007, 12, 200–206. [CrossRef]

155. אנטונופולו, I.; וריאלה, ש.; Topakas, E.; רובה, יו.; כריסטאקופולוס, פ. Faraco, V. סינתזה אנזימטית של תרכובות ביו-אקטיביות עם פוטנציאל גבוה ליישום קוסמטי. יישום מיקרוביול. ביוטכנולוגיה. 2016, 100, 6519–6543. [CrossRef]

156. סוגימוטו, ק.; נומורה, ק.; נישימורה, ט.; קיסו, ט.; סוגימוטו, ק.; Kuriki, T. סינתזות של אלפא-ארבוטין-אלפא-גליקוזידים והשפעותיהם המעכבות על טירוזינאז אנושי. J. Biosci. ביואנג. 2005, 99, 272–276. [CrossRef]

157. Sekhon Randhawa, KK; Rahman, PK Rhamnolipid biosurfactants-עבר, הווה ועתיד של השוק העולמי. חֲזִית. מיקרוביול. 2014. [CrossRef]

158. Marchant, R.; Banat, IM Biosurfactants: תחליף בר קיימא לחומרי שטח כימיים? ביוטכנולוגיה. Lett. 2012, 34, 1597–1605. [CrossRef] [PubMed]

159. לאנג, ש; Wullbrandt, D. Rhamnose lipids-ביוסינתזה, ייצור חיידקים ופוטנציאל יישום. יישום מיקרוביול. ביוטכנולוגיה. 1999, 51, 22–32. [CrossRef]

160. חבה, ע.; פינאזו, א.; Jauregui, O.; Espuny, MJ; אינפנטה, MR; Manresa, A. אפיון פיזיקוכימי ותכונות אנטי-מיקרוביאליות של rhamnolipids המיוצרים על ידי Pseudomonas aeruginosa 47T2 NCBIM 40044. Biotechnol. ביואנג. 2003, 81, 316–322. [CrossRef]

161. Piljac, G.; Piljac, T. שימוש ברמנוליפידים בריפוי פצעים, טיפול בהלם כוויות, טרשת עורקים, השתלות איברים, דיכאון, סכיזופרניה וקוסמטיקה. מספר פטנט אמריקאי US7262171B1. 2000.

162. טולי, ה.ס; Chaudhary, P.; בניוואל, ו.; Sharma, AK פיגמנטים מיקרוביאליים כמקורות צבע טבעיים: מגמות נוכחיות ונקודות מבט עתידיות. J. Food Sci. טק. 2015, 52, 4669–4678. [CrossRef] [PubMed]

163. קארו, י.; ונקטכלאם, מ.; Lebeau, J.; Fouillaud, M.; Dufossé, L. פיגמנטים וחומרי צבע מפטריות חוטיות. Metab פטרייתי. 2017, 499–568. [CrossRef] 164. Souza, PN; גריגולטו, TL; אבראו, LM; Guimarães, LH; סנטוס, סי; Galvão, LR; Cardoso, PG ייצור ואפיון כימי של פיגמנטים בפטריות חוטיות. מיקרוביולוגיה 2016, 162, 12–22.

165. ראו, נ.; פראבהו, מ.; שיאו, מ.; Li, WJ פיגמנטים פטרייתיים וחיידקיים: מטבוליטים משניים עם יישומים רחבים. חֲזִית. מיקרוביול. 2017. [CrossRef]

166. קודוס, מ.; סינג, פ.; תומאס, ג'; אל-חזימי, א. התפתחויות אחרונות בייצור ויישומים ביוטכנולוגיים של C-phycocyanin. ביומד. מילון Int. 2013. [CrossRef] [PubMed]

167. Nicoletti, M. Microalgae Nutraceuticals. Foods 2016, 5, 54. [CrossRef] [PubMed]

168. Graverholt, OS; Eriksen, NT תרבויות הטרוטרופיות בצפיפות תאים מוזנת-אצווה ורציפות-עמיתות של Galdieria sulphuraria וייצור של phycocyanin. יישום מיקרוביול. ביוטכנולוגיה. 2007, 77, 69–75. [CrossRef]

169. Carroll, AL; Desai, SH; Atsumi, S. ייצור מיקרוביאלי של תרכובות ריח וטעם. Curr. דעה. Chem. ביול. 2016, 37, 8–15. [CrossRef] [PubMed]

170. לונגו, מ.א.; Sanromán, MA ייצור תרכובות ארומה של מזון: מתודולוגיות מיקרוביאליות ואנזימטיות. Food Technol. ביוטכנולוגיה. 2006, 44, 335–353.

171. קמפף, ב.; Bremer, E. קליטה וסינתזה של מומסים תואמים כתגובות מתח מיקרוביאליות לסביבות עם אוסמולאליות גבוהה. קֶשֶׁת. מיקרוביול. 1998, 170, 319–330. [CrossRef]

172. סוקול, CR; מדיירוס, א.ב; Vandenberghe, LP; Wojciechowski, AL תרכובות טעם המיוצרות על ידי פטריות, שמרים וחיידקים. Handb. Food Prod. Manuf. 2007, 1, 179–191.

173. Vandamme, EJ Bioflvours וניחוחות באמצעות פטריות והאנזימים שלהם. צוללני פטריות. 2003, 13, 153–166.

174. קאראו, פ.; בוידו, ע.; Dellacassa, E. גיוון שמרים ותרכובות טעם. במטבוליטים פטרייתי; Mérillon, JM, Ramawat, K., Eds.; Springer International Publishing: Cham, שוויץ, 2016; עמ' 1–29.

175. פריפרט, ה.; רבנהורסט, י. Steinbüchel, A. ייצור ביוטכנולוגי של ונילין. יישום מיקרוביול. ביוטכנולוגיה. 2001, 56, 296–314. [CrossRef]

176. Kunjapur, AM; Tarasova, Y.; Prather, KLJ סינתזה והצטברות של אלדהידים ארומטיים בזן מהונדס של Escherichia coli. ריבה. Chem. Soc. 2014, 136, 11644–11654. [CrossRef] [PubMed]

177. אלונסו-גוטיארז, י. צ'אן, ר.; באת', TS; אדמס, PD; Keasling, JD; Petzold, CJ הנדסה מטבולית של Escherichia coli לייצור אלכוהול לימונן ופריליל. Metab. Eng. 2013, 19, 33–41. [CrossRef]

178. אוקינו, ט.; Qi, S.; מטסודה, ה.; מורקמי, מ.; Yamaguchi, K. Nostopeptins A ו-B, מעכבי אלסטאז מהציאנובקטריה Nostoc minutum. ג'יי נאט. לְדַרבֵּן. 1997, 60, 158–161. [CrossRef]

179. גאורגוסאקי, ק.; דפדרו, נ.; צ'ינצ'ילה, א.; Aliagiannis, N.; ויסנטה, פ.; דה קסטרו, פ.; פוטינוס, ש.; Genillod, O.; Fokialakis, N. סינון תפוקה גבוהה של המגוון הביולוגי המיקרוביאלי לגילוי סוכנים קוסמטיים חדשים. פנטה מד. 2015. [CrossRef]

180. גאורגוסאקי, ק.; צפנטקיס, נ.; צ'ילרי, א.; גומני, ש.; גונזלס, I.; גונזלס, ו.; José, RT; Genillod, O.; פוטינוס, ש.; Trougakos, I.; et al. גילוי של סוכנים קוסמטיים חדשים ממיקרואורגניזמים אנדופיטים של המגוון הביולוגי הספרדי. פלנטה מד. 2017. [CrossRef]

181. סיקיוטיס, GP; Bohmann, D. גורמי שעתוק cap'n'collar המופעלים על ידי מתח בהזדקנות ומחלות אנושיות. Sci. אוֹת. 2010. [CrossRef] [PubMed]

182. ודל, ש; מנולה, מ.; Cavinato, M.; Trougakos, IP; Jansen-Durr, P. מיקוד מנגנוני בקרת איכות חלבון על ידי מוצרים טבעיים לקידום הזדקנות בריאה. מולקולות 2018, 23, 1219. [CrossRef]

183. Morimoto, RI; Cuervo, AM Proteostasis והפרוטאומה המזדקנת בבריאות ובמחלות. J. Gerontol. א ביול. Sci. Med. Sci. 2014. [CrossRef] [PubMed]

184. הואנג, ל.; Chen, CH מווסת פרוטאזום: מפעילים ומעכבים. Curr. Med. Chem. 2009, 16, 931–939. [CrossRef]

185. Peyrat, LA; Eparvier, V.; Eydoux, C.; Guillemot, JC; ליטודון, מ.; Stien, D. Betulinic acid, הטריטרפנואיד הראשון מסוג תורמוס שבודד משני Phomopsis sp. והצמח המארח שלו Diospyros carbonara Benoist. Chem. צוללנים ביולוגיים. 2017. [CrossRef] [PubMed]

למידע נוסף: david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501